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Registro Completo |
Biblioteca(s): |
Embrapa Semiárido. |
Data corrente: |
12/02/2009 |
Data da última atualização: |
25/01/2024 |
Tipo da produção científica: |
Artigo em Anais de Congresso / Nota Técnica |
Autoria: |
SOUZA, R. N. C. de; DIAS, R. de C. S.; AMARAL, C. M. do; ALVES, J. C. da S. F. |
Afiliação: |
Renata Natália Cândido de Souza, UPE; RITA DE CASSIA SOUZA DIAS, CPATSA; Cícera Maria do Amaral, CPATSA; Juliana Carla da Silva Farias Alves, UPE. |
Título: |
Multiplicação e caracterização de acessos de maxixe. |
Ano de publicação: |
2008 |
Fonte/Imprenta: |
In: ENCONTRO DA REDE DE RECURSOS GENÉTICOS VEGETAIS DO ESTADO DA BAHIA, 3.; SIMPÓSIO DE RECURSOS GENÉTICOS DE PLANTAS CULTIVADAS NO NORDESTE BRASILEIRO, 2., 2008, Vitória da Conquista. Resumos expandidos... Vitória da Conquista: UESB, 2008. |
Descrição Física: |
1 CD-ROM. |
Idioma: |
Português |
Conteúdo: |
O presente trabalho foi realizado com o objetivo de multiplicar e caracterizar 18 acessos demaxixe do Banco de Germoplasma de Cucurbitáceas para o Nordeste Brasileiro. Os acessosforam semeados em placas de Petri, mantidas em câmara de germinação BOD. Após agerminação, foram colocados em bandejas de poliestireno, contendo substrato comercial parahortaliças, onde foram mantidas até o transplantio para o campo, quando a muda possuía trêsfolhas definitivas. Utilizou-se delineamento experimental de blocos ao acaso, com duasrepetições e quatro plantas por parcela, espaçamento de 2,0 x 0,30 m e irrigação porgotejamento. Realizou-se polinização manual controlada (PMC). O comprimento da ramaprincipal e o número de ramos variaram de 1,0 a 6,7 m e 3,7 a 17,5, respectivamente. Acolheita ocorreu aproximadamente 40 dias após a PMC. Na caracterização dos frutosverificou-se que 55,5% continham espículas, 39% sem espículas e 5,5% segregaram. Oformato variou entre cilíndrico (77,8%) e aperado (22,2%). O peso médio de 20 g a 70 g. Osfrutos imaturos apresentaram sólidos solúveis de 2,4 a 3,6 oBrix , a cor do epicarpo verde e depolpa, verde esbranquiçado. Verificou-se, independentemente do estádio de maturação,presença de listras em 44,5% dos acessos e ausência em 33,3%. Obtiveram-se frutos de PMCem 16 acessos, nos demais foram caracterizados frutos de polinização livre. A multiplicação ecaracterização dos acessos de maxixe incrementarão o uso e a formação de uma coleção base(colbase) para conservação a longo prazo e preservação da variabilidade da espécie. MenosO presente trabalho foi realizado com o objetivo de multiplicar e caracterizar 18 acessos demaxixe do Banco de Germoplasma de Cucurbitáceas para o Nordeste Brasileiro. Os acessosforam semeados em placas de Petri, mantidas em câmara de germinação BOD. Após agerminação, foram colocados em bandejas de poliestireno, contendo substrato comercial parahortaliças, onde foram mantidas até o transplantio para o campo, quando a muda possuía trêsfolhas definitivas. Utilizou-se delineamento experimental de blocos ao acaso, com duasrepetições e quatro plantas por parcela, espaçamento de 2,0 x 0,30 m e irrigação porgotejamento. Realizou-se polinização manual controlada (PMC). O comprimento da ramaprincipal e o número de ramos variaram de 1,0 a 6,7 m e 3,7 a 17,5, respectivamente. Acolheita ocorreu aproximadamente 40 dias após a PMC. Na caracterização dos frutosverificou-se que 55,5% continham espículas, 39% sem espículas e 5,5% segregaram. Oformato variou entre cilíndrico (77,8%) e aperado (22,2%). O peso médio de 20 g a 70 g. Osfrutos imaturos apresentaram sólidos solúveis de 2,4 a 3,6 oBrix , a cor do epicarpo verde e depolpa, verde esbranquiçado. Verificou-se, independentemente do estádio de maturação,presença de listras em 44,5% dos acessos e ausência em 33,3%. Obtiveram-se frutos de PMCem 16 acessos, nos demais foram caracterizados frutos de polinização livre. A multiplicação ecaracterização dos acessos de maxixe incrementarão o uso e a formação de uma coleção base(colbase) para conse... Mostrar Tudo |
Palavras-Chave: |
Acesso; Descritor morfológico; Recursos genéticos. |
Thesagro: |
Banco de Germoplasma; Cucumis Anguria; Maxixe. |
Categoria do assunto: |
F Plantas e Produtos de Origem Vegetal |
URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CPATSA-2009-09/40188/1/OPB2228.pdf
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Marc: |
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Registro original: |
Embrapa Semiárido (CPATSA) |
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Biblioteca |
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Cutter |
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| Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Para informações adicionais entre em contato com cenargen.biblioteca@embrapa.br. |
Registro Completo
Biblioteca(s): |
Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
Data corrente: |
01/03/2001 |
Data da última atualização: |
24/09/2014 |
Autoria: |
TENENTE, R. C. V.; LEAL-BERTIOLI, S.C.de M. |
Título: |
Tecnicas bioquimicas e moleculares na diagnose de fitonematoides. |
Ano de publicação: |
1999 |
Fonte/Imprenta: |
Brasilia: Embrapa Recursos Geneticos e Biotecnologia, 1999 |
Páginas: |
37p. |
Série: |
(Embrapa Recursos Geneticos e Biotecnologia. Boletim de Pesquisa, 6) |
Idioma: |
Português |
Conteúdo: |
Diversos parametros afetam a identificacao de fitonematoides e esta deve ser precisa em relacao a generos, especies e racas, devido a adocao de medidas quarentenarias e de controle desses parasitas. A identificacao normalmente e baseada na analise de caracteres morfologicos, atraves de microscopio otico, de varredura ou de transmissao. Entretanto, para especies afins, a morfologia dos individuos apresenta baixa sensibilidade. Contudo, as caracteristicas fisiologicas, citogeneticas, sorologicas e moleculares podem estabelecer e apresentar diferencas entre generos, especies ou ate populacoes morfologicamente semelhantes. A identificacao destes e possivel atraves de hospedeiros diferenciais, padroes enzimaticos e proteicos e pela analise direta do material genetico. Com excecao das tecnicas de analise de DNA (ex. RFLP, PCR e AFLP), as demais estao sujeitas a variacoes fenotipicas, influencia do meio ambiente e estadio de desenvolvimento dos nematoides. Apesar de cada uma dessas tecnicas apresentar limitacoes de uso em diagnostico de rotina, elas estao sendo utilizadas na identificacao de diferentes generos de nematoides, apresentando portanto um enorme potencial para diferenciacao destes organismos ao nivel subespecifico. |
Palavras-Chave: |
Biochemical; Bioquímica Molecular; Brasil; Diagmostico; Diagnosis; Disease; Fitonematoide; Fitopatologia; Methods; Metodologia; Molecular; Nematode; Plant; Plant disease; Plant diseases; Sustainability agriculture; Tecnica bioquimica. |
Thesagro: |
Agricultura Sustentável; Análise; Biologia Molecular; Bioquímica; Diagnostico; Doença; Doença de Planta; Genética Molecular; Germoplasma; Nematóide; Parasito de Planta; Planta; Quarentena. |
Thesaurus NAL: |
analytical methods; biochemistry; detection; molecular biology; Nematoda; parasites; quarantine. |
Categoria do assunto: |
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Marc: |
LEADER 02799nam a2200589 a 4500 001 1179936 005 2014-09-24 008 1999 bl uuuu u0uu1 u #d 100 1 $aTENENTE, R. C. V. 245 $aTecnicas bioquimicas e moleculares na diagnose de fitonematoides. 260 $aBrasilia: Embrapa Recursos Geneticos e Biotecnologia$c1999 300 $a37p. 490 $a(Embrapa Recursos Geneticos e Biotecnologia. Boletim de Pesquisa, 6) 520 $aDiversos parametros afetam a identificacao de fitonematoides e esta deve ser precisa em relacao a generos, especies e racas, devido a adocao de medidas quarentenarias e de controle desses parasitas. A identificacao normalmente e baseada na analise de caracteres morfologicos, atraves de microscopio otico, de varredura ou de transmissao. Entretanto, para especies afins, a morfologia dos individuos apresenta baixa sensibilidade. Contudo, as caracteristicas fisiologicas, citogeneticas, sorologicas e moleculares podem estabelecer e apresentar diferencas entre generos, especies ou ate populacoes morfologicamente semelhantes. A identificacao destes e possivel atraves de hospedeiros diferenciais, padroes enzimaticos e proteicos e pela analise direta do material genetico. Com excecao das tecnicas de analise de DNA (ex. RFLP, PCR e AFLP), as demais estao sujeitas a variacoes fenotipicas, influencia do meio ambiente e estadio de desenvolvimento dos nematoides. Apesar de cada uma dessas tecnicas apresentar limitacoes de uso em diagnostico de rotina, elas estao sendo utilizadas na identificacao de diferentes generos de nematoides, apresentando portanto um enorme potencial para diferenciacao destes organismos ao nivel subespecifico. 650 $aanalytical methods 650 $abiochemistry 650 $adetection 650 $amolecular biology 650 $aNematoda 650 $aparasites 650 $aquarantine 650 $aAgricultura Sustentável 650 $aAnálise 650 $aBiologia Molecular 650 $aBioquímica 650 $aDiagnostico 650 $aDoença 650 $aDoença de Planta 650 $aGenética Molecular 650 $aGermoplasma 650 $aNematóide 650 $aParasito de Planta 650 $aPlanta 650 $aQuarentena 653 $aBiochemical 653 $aBioquímica Molecular 653 $aBrasil 653 $aDiagmostico 653 $aDiagnosis 653 $aDisease 653 $aFitonematoide 653 $aFitopatologia 653 $aMethods 653 $aMetodologia 653 $aMolecular 653 $aNematode 653 $aPlant 653 $aPlant disease 653 $aPlant diseases 653 $aSustainability agriculture 653 $aTecnica bioquimica 700 1 $aLEAL-BERTIOLI, S.C.de M.
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Registro original: |
Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia (CENARGEN) |
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